3.3.3实验室病原微生物危害评价评估资料.doc

实验室病原微生物实验室病原微生物 危害评估报告危害评估报告第 1 版生效日期：生效日期：2017 年年 8 月月 16 日日 莱芜市中医医院检验科莱芜市中医医院检验科目目 录录第一章 检验科实验活动生物危害评估报告3第二章 人类免疫缺陷病毒 HIV 的生物危害评估报告10第三章 结核分枝杆菌的生物危害评估报告13第四章 霍乱弧菌的生物危害评估报告17第五章 流感病毒的危害评估报告22第六章 梅毒螺旋体的生物危害评估报告24第七章 SARS 冠状病毒的生物危害评估报告26第八章 脑炎病毒的生物危害评估报告28第九章 淋病奈瑟氏菌的生物危害评估报告33第十章 鼠疫耶尔森菌的生物危害评估报告36第十一章 伤寒杆菌的生物危害评估报告39第十二章 肝炎病毒的生物危害评估报告42第十三章 禽流感病毒危害评估报告46第十四章 肠道病毒 71 型危害评估报告49第十五章 汉坦病毒危害评估报告52第十六章 炭疽芽胞杆菌的生物危害评估报告55第一章第一章 检验科实验活动生物危害评估报告检验科实验活动生物危害评估报告为保证实验室工作人员在工作中不被危害性生物及物品所侵害，保证危害性物品不外 泄，对实验室工作环境进行评估，以鉴定生物安全防护等级，保证生物安全。一、危害程度分类及生物安全防护水平评估一、危害程度分类及生物安全防护水平评估 本检验科是为医院诊断、预防、治疗人体疾病或评估人体健康提供信息为目的，对来 自人体的材料进行临床生物化学、临床微生物、临床免疫学、临床血液、细胞遗传学等检 验的实验室。生物源危害主要是由各种检验标本中的微生物，尤其是病原微生物引起的， 包括细菌、病毒、寄生虫等，具有潜在危险性，可能引起实验室感染；检验科微生物室还 进行一定数量的各种条件致病性细菌及真菌的分离培养工作，工作过程存在病原微生物对 实验人员、环境污染的风险；除之以外实验室还存在触电、火灾、化学品腐蚀、偷盗等危 险。根据实验室生物安全通用要求 ，本检验科不涉及人间传染的病原微生物名录中 高致病性微生物的分离培养及高致病性微生物的菌、毒种的保藏，实验室采用一定防护措 施就能控制感染或防范灾害，或者对相应病原体存在有效的免疫方法。评估我检验科生物 安全防护水平按二级实验室（BSL-2）生物安全要求。二、实验人员和实验室安全防护的一般要求二、实验人员和实验室安全防护的一般要求 1.吸烟危害评估及防护吸烟危害评估及防护 （1）实验室工作区内绝对禁止吸烟； （2）点燃的香烟是易燃液体的潜在火种； （3）香烟、雪茄或烟斗都是传染细菌和接触毒物的途径。 2. 实验区内食用食物、饮料及其它危害评估及防护实验区内食用食物、饮料及其它危害评估及防护 （1）实验工作区内不得有食物、饮料及存在“手口”接触可能的其它物质 （2）实验室工作区内的冰箱禁止存放食物。专用存放食物的冰箱应放置在允许进食、喝 水的休息区内。 3.使用化妆品危害评估及防护使用化妆品危害评估及防护 实验工作区内禁止使用化妆品进行化妆，但允许并建议经常洗手的实验人员使用护手霜。4. 实验中眼睛和面部的风险评估及防护实验中眼睛和面部的风险评估及防护 （1）处理腐蚀性或毒性物质时，须使用安全镜、面罩或其它保护眼睛和面部的防护用品。（2）工作人员在实验室的危险区内不要佩戴隐形眼镜，除非同时使用护目镜或面罩。 （3）使用、处理能够通过粘膜和皮肤感染的试剂，或有可能发生试剂溅溢的情况时，必 须佩带护目镜、面罩或面具式呼吸器。 5. 实验中服装和个人防护装备的一般要求实验中服装和个人防护装备的一般要求 （1）应穿着符合实验室工作需要的服装，工作服应干净、整洁。当工作中有危险物喷溅 到身上的可能时，应使用一次性塑料围裙或防渗外罩。有时还需要佩戴其它防护装备如： 手套、护目镜、披肩或面罩等。 （2）采血员和其他需要接触病员的工作人员，在接触病员时需穿实验服或工作服。 （3）个人防护服装应定期更换以保持清洁，遇被危险物品严重污染，则应立即更换（4）不得在实验室内设值班床，严禁在实验室内住宿。 6. 实验中足部防护的一般要求实验中足部防护的一般要求 在工作区内，应穿舒适、防滑、并能保护整个脚面的鞋。在有可能发生液体溅溢的工作 岗位，可加套一次性防渗漏鞋套。帆布鞋可吸收化学物品和有传染性的液体，所以最好穿 皮革或其它防渗漏的合成材料的鞋。 7. 实验中头发和饰物的风险评估及防护实验中头发和饰物的风险评估及防护 留长发的工作人员应将头发盘在脑后，以防止头发接触到被污染物和避免人体脱屑落入 工作区。头发不得垂肩，应与离心机、切片机等正在运转的器械保持一定距离 8. 实验中胡须的风险评估及防护实验中胡须的风险评估及防护 蓄有胡须的男性工作人员必须遵守上项（7）的规定。 9.洗手的要求洗手的要求 实验室工作人员在脱下手套后、离开实验室前、接触患者前后、以及在进食或吸烟前都 应该洗手。接触血液、体液或其它污染物时，应立即洗手。 10.用口移液的危害评估及防护用口移液的危害评估及防护 用口液移可导致多种病原体的实验室感染。 所有实验室操作禁止用口液移，应使用助吸器具。 11.锐利物品的危害评估及防护锐利物品的危害评估及防护 谨慎处理针头、解剖刀、和碎玻璃等锐利物品。使用后的针具不要折断、弯曲、破损、 重复使用或用手重装在针管上。一次性注射器上的针头用后不要取下。锐利物品应立即放 置在专用锐器盒内，在完全装满之前或 48 小时之内更换。 12.隔离措施的要求隔离措施的要求 接触患者时，实验室工作人员应遵守医院的隔离措施。 13.工作环境的要求工作环境的要求 （1） “清洁”区和“非清洁”区 根据实验室的具体工作情况由主任选择并确定“清洁”和“非清洁”工作区，在清洁区 和非清洁区之间设“缓冲室” 。被指定为“清洁”的区域，则应努力保持清洁，如采取预防 措施，防止电话、视频显示器终端、键盘、门柄及其它经常被手或手上的手套触摸的物品 的污染，要求工作人员在触摸设备（如计算机键盘及电话的保护罩等）前取下手套，制定 仪器设备和工作面的常规消毒和清洁制度和对严重污染的紧急处理措施办法。 被指定为“非清洁”的区域，允许戴手套接触所有物品（如电话、门柄、计算机终端和 其它物品） ，所有这些物品的表面都认为是不清洁的。未戴手套的人员如果使用该区域内的 电话、计算机终端或其它设备，应该戴上手套，或在使用后立即彻底洗手。 “清洁”和“非清洁”区都应保持整洁。实验台至少应每天清洁、消毒一次，如有必要 可以多次清洗、消毒。在处理溅溢的样品或严重污染的工作面时，应戴上手套和其它个人 防护装备、使用相应合适的清洁剂清除所有的溅溢物。 （2）冰箱、冷冻柜、水浴和离心机应该定期清洗和消毒（时间由实验室主任来决定） ， 在发生严重污染后应立即进行清洗和消毒。进行清洗、消毒时要戴上手套，穿上工作服或 其它合适的防护服。 （3）外衣：外衣（实验服、工作服、和围裙）应悬挂在远离散热器、蒸汽管道、供暖装置、以及有明火的地方，不要挂在压缩气瓶或灭火器上，也不要挂在门的玻璃隔板上， 妨碍视线。 “清洁”的和“非清洁”的个人防护服要分开存放。 （4）垃圾处理：每天至少清理垃圾一次。 （5）装饰：不得在电灯、灯座或仪器上进行装饰，更不要使用电子装饰物、蜡烛、圣诞 树等有引起火灾危险的装饰品。 （6）为便于清洁消毒，实验室内不应有织物装饰的用具或椅子。 （7）个人物品：实验工作区不得存放个人物品，如钱包、外套、皮靴、咖啡杯、运动服、 预包装的食品和药品等。 （8）实验室内应配备应急设备，如应急洗眼装置，酒精等消毒用品。 （9）实验室应安装非手触式洗手装置。 （10）实验室内应安装防蚊蝇装置，应定期投撒灭蟑螂、老鼠的药物。 （11）用后的废弃物品：实验工作区内的用后废弃物品存量不要太大。具危险性的液体 如酸或碱性液体应放在视平线以下。较大的废弃物容器应靠近地面存放。 （12）出口通路：实验室的出口和通道必须保持畅通无阻，不准堆放物品、垃圾、装置、 或设备。安全门必须保持畅通，不得堵塞。 注意：无论任何时间、何种原因都不得阻塞通往灭火器、火警箱、防火毯、安全淋浴或 出口的道路。 14.使用玻璃器具的危害评估及防护使用玻璃器具的危害评估及防护 操作玻璃器具时应遵循下述安全规则： （1）不使用破裂或有缺口的玻璃器具。 （2）不要用猛力取下玻璃试管上的塞子，粘紧的试管可用刀切开分离。 （3）接触过传染性物的玻璃器具，清洗之前，应先行消毒。 （4）破裂的玻璃器具和玻璃碎片应丢弃在有专门标记的、单独的、不易刺破的容器里。 （5）高热操作玻璃器具时应戴隔热手套。 （6）在不影响实验质量的前提下，应尽量减少使用玻璃器具。15. 使用离心机的危害评估及防护使用离心机的危害评估及防护 感染途径感染途径危害评危害评 估估感染途径感染途径危害评危害评 估估感染途径感染途径危害评估危害评估皮肤皮肤极少粘膜（眼结膜）粘膜（眼结膜） 可能呼吸道呼吸道可能消化道（经手消化道（经手 -口）口）极少经血（针刺伤、经血（针刺伤、 切割伤）切割伤）极少经血（虫媒经血（虫媒 介）介）极少（1）气溶胶：离心过程中应控制气溶胶的产生在最低水平。 （2）操作：离心机只有在盖好盖板后，才能启动。 （3）传染性物品：所有能够产生气溶胶进行播散的生物制品或标本，都应使用密封的离 心管，并在盖紧的离心头或转头中进行。 （4）为防止气溶胶飞溢，应在离心停止 30 分钟后打开离心物。 （5）清洗：按照消毒隔离制度要求清洗离心机。 （6）平衡：离心时应保持合适的平衡，以保证离心的顺利进行。16采集血样的危害评估及防护采集血样的危害评估及防护 感染途径感染途径危害评危害评 估估感染途径感染途径危害评危害评 估估感染途径感染途径危害评估危害评估皮肤皮肤极少粘膜（眼结膜）粘膜（眼结膜） 极少呼吸道呼吸道可能消化道（经手消化道（经手 -口）口）极少经血（针刺伤、经血（针刺伤、 切割伤）切割伤）可能经血（虫媒经血（虫媒 介）介）极少盗窃盗窃可能化学腐蚀化学腐蚀极少放射放射无 （1）每天早晨用 500mg/L 的”84”消毒液擦拭抽血台面及其它物表，并开紫外灯消毒至 少 30 分钟，并做好记录。 （2）工人每天早晨更换消毒液，包括浸泡锐器、止血带的消毒液和手消毒液。 （3）工作人员必须穿工作服，戴好口罩、帽子、和手套。 （4）使用合格的一次性用品。严禁使用包装破损，超过有效期的一次性用品。 （5）严格执行无菌技术操作规程、静脉采血必须一人一针一管一巾一带。微量采血应做 到一人一针一管一片，对每位病人操作前洗手或手消毒。 （6）无菌物品如棉球需每天更换，开启后使用不得超过 24 小时。 （7）工作人员需对锐器如采血针采取高度预防措施，用过的采血针需浸泡在含有消毒液 的厚壁容器中。17. 标本标本(血清、血浆、全血、尿血清、血浆、全血、尿)上检验分析仪检测过程的危害评估及防护上检验分析仪检测过程的危害评估及防护 感染途径感染途径危害评危害评 估估感染途径感染途径危害评危害评 估估感染途径感染途径危害评估危害评估皮肤皮肤极少粘膜（眼结膜）粘膜（眼结膜）可能呼吸道呼吸道可能消化道（经手消化道（经手 -口）口）极少经血（针刺伤、经血（针刺伤、 切割伤）切割伤）极少经血（虫媒经血（虫媒 介）介）极少盗窃盗窃可能化学腐蚀化学腐蚀无放射放射无 （1）为了避免液滴和气溶胶和扩散，实验室仪器加样、加液，清洗等过程应在封闭罩内 进行的。 （2）实验中使后的比色盘，反应杯等废弃物应当收集在封闭的容器内，集中处置。 （3）在每一步完成后应根据操作指南对对仪器进行消毒。血液、体液污染物表时，应立 即消毒。 （4）工作人员要戴手套进行操作。18. 标本标本(血清、血浆、全血、尿、粪血清、血浆、全血、尿、粪)手工检测过程的危害评估及防护手工检测过程的危害评估及防护 感染途径感染途径危害评危害评 估估感染途径感染途径危害评危害评 估估感染途径感染途径危害评估危害评估皮肤皮肤可能粘膜（眼结膜）粘膜（眼结膜）可能呼吸道呼吸道可能消化道（经手消化道（经手可能经血（针刺伤、经血（针刺伤、可能经血（虫媒经血（虫媒极少-口）口）切割伤）切割伤）介）介） 盗窃盗窃可能化学腐蚀化学腐蚀可能放射放射无 （1）每天早晨做好实验室的清洁消毒工作。 （2）工作人员要戴口罩、手套进行操作。 （3）实验中使用的竹签用后要用 1000mg/L“84”消毒液浸泡。 （4）废弃的标本连同试管、盖帽要用 1000mg /L“84”消毒液浸泡，由工人统一清洁后 进行无害化处理。 （5）实验中使用的吸头、一次性塑料杯用后要用 1000mg/L“84”消毒液浸泡。 （6）标本污染物表时，应立即消毒。 （7）离心时，发生试管破裂或标本溅出，由操作者负责用有效消毒剂对离心机内部进行 及时消毒处置。19微生物分离鉴定药敏试验及基因扩增试验活动的危害评估及防护微生物分离鉴定药敏试验及基因扩增试验活动的危害评估及防护 感染途径感染途径危害评危害评 估估感染途径感染途径危害评危害评 估估感染途径感染途径危害评估危害评估皮肤皮肤可能粘膜（眼结膜）粘膜（眼结膜）可能呼吸道呼吸道可能消化道（经手消化道（经手 -口）口）可能经血（针刺伤、经血（针刺伤、 切割伤）切割伤）可能经血（虫媒经血（虫媒 介）介）可能盗窃盗窃可能化学腐蚀化学腐蚀极少放射放射无 （1）每天早晨开紫外灯消毒空气至少 30 分钟，同时做好各物表、仪器的清洁消毒工作。（2）实验人员要戴手套、帽子进行操作。当估计会出现微生物和危险物溅出时要戴好眼 罩或面罩。 （3）操作中使用的接种环、镊子等金属物品要在酒精灯火焰上烧灼灭菌。 （4）可能产生致病性微生物气溶胶或出现溅出的操作如涂片、接种时，应在生物安全柜 内操作，并使用个体防护设备。 （5）实验室内的各种标本、菌种、培养基和其它废弃物在运出实验室前必须灭活（高压、 浸泡） ，需运出实验室灭活的物品必须放在专用的密闭容器中。 （6）操作过程中发生菌种污染物表时，应马上采取措施进行物表消毒。 （7）当发生致病性微生物气溶胶污染时，应马上进行人员疏散，通知负责人到现场进行 指导消毒。 （8）对菌种的保存应严格遵守菌种保存制度，严禁擅自保存各种国家法定传染病菌株或 毒株。 （9）实验人员离开实验室前要去除手套，确认无污染或污染已排除，后方可洗手离去。 （10）微生物、PCR 实验室要设置纱窗、挡鼠板。三、特定实验活动危害评估（见以下章节之各种病原体的危害评估）三、特定实验活动危害评估（见以下章节之各种病原体的危害评估）4、工作人员素质工作人员素质本实验室共有技术人员 20 名，其中申请进入 BSL-2 实验室 20 名。学士学位 3 名，3 名曾经从事微生物学实验，3 名曾经从事无菌实验室活动经历，5 名技术人员学习过生物安 全手册并通过定期培训及考核成绩合格，经体检无现患严重疾病，本实验室除 HBV 携带者 1 名无其他患传染性疾病的技术人员，健康状态良好。五、评估结论五、评估结论 本次评估本实验室共 19 项可能潜在危险的实验活动，在实验操作实验施过程中在无控 制措施情况下可能产生的高危害度 5 项，中度 14 项，低度 0 项；对危害发生的可能性分析， 实验危害较大可能发生的有 0 项，可能发生 5 项，较少可能发生 14 项；这些危害造成高度 严重后果的 5 项，后果严重性中度的 14 项，后果严重性低度的 0 项。根据拟采取的预防控 制措施后依然存在的残留风险为高度 0 项，中度 0 项，低度危害 19 项。评评 估：瑞昌市人民医院检验科估：瑞昌市人民医院检验科评估人：评估人：审审 核：瑞昌市人民医院生物安全管理委员会核：瑞昌市人民医院生物安全管理委员会审核人：审核人：2016 年年 4 月月 28 日日第二章第二章 人类免疫缺陷病毒人类免疫缺陷病毒 HIV 的生物危的生物危害评估报告害评估报告人类免疫缺陷病毒（HIV）病毒特异性地侵犯 CD4+T 淋巴细胞，造成机体细胞免疫受损。临床上初始表现为无症状病毒感染者，继续发展为持续性全身淋巴结肿大综合征和艾滋病综合征，最后并发各种严重机会性感染和恶性肿瘤，成为 AIDS，病死率极高。到目前为止，还没有找到一种治愈该病的方法。1 病原学病原学11 HIV 是单链 RNA 病毒，属逆转录病毒科，慢病毒属，包括 HIV-1 型和HIV-2 型，两者均能引起 AIDS。但多数 AIDS 乃由 HIV-1 型引起。HIV 既有嗜淋巴细胞性又有嗜神经性，主要感染 CD4+T 淋巴细胞，也能感染单核巨噬细胞，B 细胞和小神经胶质细胞、骨髓干细胞等。12 HIV 的抵抗力：HIV 对外界抵抗力较弱，对热敏感，5630 分钟能灭活。25%以上浓度的酒精即能灭活病毒，70%的效果最好；0.2%次氯酸钠、5%8%甲醛及有机氯溶液等均能灭活病毒。但对 0.1%甲醛溶液、紫外线和 射线不敏感。在实验室条件下，HIV 在干燥环境中很快失去活性，在厚血块中可存活十几天，在干燥的玻璃上可维持几天。美国 CDC 证明干燥环境中的 HIV 浓度在几小时内降低 90%99%。2 流行病学流行病学21 传染源：病人和无症状病毒携带者是主要的传染源，前者的传染性最强，后者在流行病学上意义更大。病毒主要存在于血液、精液、子宫和阴道分泌物中；乳汁、唾液、泪水等均能检出病毒。22 传播途径：世界公认的传播途径有三种，即性传播、血液传播及母婴传播。23 人群易感性：各个年龄均可感染，但同性恋和性乱交者，静脉毒瘾者，血友病患者，接受血、血制品或器官移植者，父母是 HIV 感染者的儿童，受感染的危险性比较大，属高危人群，发病年龄主要为 40 岁以下的青状年。3 临床表现临床表现本病潜伏期较长，HIV-1 侵入机体后 210 年左右可以发展为 AIDS，HIV-2 所需的时间更长。HIV 感染人体后分为、四期，HIV 对 CD4+T淋巴细胞有特殊的亲嗜性，发病与 HIV 含量、毒力、变异及 CD4+T 淋巴细胞数量、功能和机体免疫状况有关。临床上可表现为原因不明的免疫缺陷，往往以淋巴结肿大、厌食、慢性腹泻、体重减轻、发热、乏力等全身症状起病，逐渐发展至各种机会性感染、继发性肿瘤、精神神经障碍而死亡。4 实验模式及危害因素分析实验模式及危害因素分析41 HIV 抗体和抗原检测：最常用的样品是血液，包括血清、血浆和全血。HIV 的主要传播途径就是血液传播，在进行采样和检测等过程中，都可能接触到血液，因此对于未知样品的检测具有潜在危险性；而对于直接接触 HIV 感染者或艾滋病病人血液和体液时，实验危险性较高，更应注意个人防护。42 HIV 核酸检测：样品有全血、血浆、组织和其他分泌物，有时还包括生物制品，此类标本具有潜在危险性，对于 HIV 感染者或艾滋病病人的样品，实验危险性较高。43 HIV 病毒培养：培养物中含大量的 HIV，对于实验人员具有相当高的传染危险性。应该在 P3 实验室内进行操作，同时严格做好个人防护工作。5安全保障措施安全保障措施51 个人防护511 高标准的个人保健对于减少感染的危险性很重要。皮肤受损、生病都会增加感染的危险性。皮肤的伤口和擦伤都应以防水敷料覆盖。512 进实验室前要摘除首饰，修剪长的带刺的指甲，以免刺破手套。513 进入实验室应穿隔离衣，戴手套。如果接触物传染危险性大，则应戴双层手套和防护眼镜。514 离开实验室前必须脱去隔离衣并洗手。515 严禁在艾滋病检测实验室内进食、饮水、吸烟和化妆。516 减少实验室内利器的使用。52 带入和带出实验室的物品521 对所有带入实验室的物品都应进行检查。含有测试样品的包裹应在安全柜或其他适当的装置内打开。522 将 HIV 测试样品转送其他实验室时，应防止对人员和环境的污染。护送样品的人应明确接收地点和接收人，实验室负责人或其指定的人员应及时确认样品已送达指定的实验室，被转入安全位置并得到妥善处理。523 污染或可能造成污染的材料在带出实验室前应进行消毒。53 消毒方法531 废弃物缸：10%（V/V）次氯酸钠（含 10，000ppm 有效氯） 。532 生物安全柜工作台面和仪器表面：70%乙醇。533 溢出物：10%次氯酸钠（V/V） 。534 污染的台面和器具：40%甲醛水溶液，也可以用过氧化氢或过氧乙酸第三章第三章 结核分枝杆菌的生物危害评估报告结核分枝杆菌的生物危害评估报告结核病是由结核分枝杆菌（偶尔可由牛型或非洲型分枝杆菌）引起的一种 细菌性疾病。结核病可累及全身各个器官，但以肺结核最为常见。该病具有传 染性强，散播面广，不分地域均可发生。结核病可由呼吸道、消化道、皮肤等 途径感染，但其主要传播途径是以空气为传播因子的呼吸道传染，而排菌的肺 结核病人传染性更大，是传播感染的主要传染源。 传播途径传播途径 呼吸道感染（respirator tract infection）是肺结核的主要传染途径（routes of infection） ，飞沬传染（droplet infection）为最常见的方式。传染源主要是排菌 的肺结核患者（尤其是痰涂片阳性未经治疗者） 。飞沬核（droplet nuclei） 10m 时可被吸人呼吸道，健康人可因吸入患者咳嗽、打喷嚏时喷出的带菌飞沫而受感染。 危害程度分级危害程度分级 微生物按其是否致病、致病力强弱、危害人体的严重性、传染性的大小、 临近人群的抵抗力、有无免疫制剂和特效治疗药物等综合评价，可分为四个不 同的危害等级。结核分枝杆菌属于 3 级危险。 3 级危险（对个体具有极大危害，对群体具有较大的危害性）：指有特殊 危险的致病菌。感染后症状较重，并可能危及生命，或者缺乏有效的预防方法、 发病后不易治疗的微生物。 实验室感染的原因及预防实验室感染的原因及预防 （一）技术操作可能导致的感染及其预防措施。 1. 接种：应使用无弹力的铂丝接种环，结核菌接种后接种环火焰灭菌易崩 散，酒精灯烧灼时要特别注意。 2. 混匀：吸管吸吹菌液时不要产生气泡，应沿容器壁排出。 3. 研磨：最好使用组织研磨器，乳钵易产生气溶胶。 4. 移液：吸管上端的棉花松紧要适度，吸液时要从管底吸取，吹出时要轻 缓，不要全部吹净，以免产生气泡，形成气溶胶。 5. 开封：要避免压力和气流的急剧变化。 6. 离心：离心管套底垫要完好，使用匹配的管、套、离心头，加盖。 7. 注射：做好个人防护，正确使用注射器。 8. 搬运：室内移动要避免滑落，移出室外要有坚实密闭的外包装。 （二）技术保障 1. 双人原则，不允许单人操作 1、2 类病原。 2. 入口处应有危险警示标识，并标明所操作的微生物的种类。 3. 培训考核上岗，掌握相关技术操作要领，熟悉规章制度，适应工作环境。4. 完备的管理措施，技术操作规范。 5. 良好的工作行为可降低生物危害风险。 实验室中的分枝杆菌及分枝杆菌气溶胶实验室中的分枝杆菌及分枝杆菌气溶胶结核病实验室工作人员，在分枝杆菌检验过程中，会接触到各种潜在感染 源标本和各种危险物，特别是许多操作易产生分枝杆菌气溶胶。含有结核分枝 杆菌的微滴核（1-5 微米）通过呼吸进入人体肺泡，可以黏附在肺泡内生长繁殖。 因此，首先要对实验室中生物危险物产生的途径和存在的地点有充分的认识， 以便明确生物安全防护的环节。 (一) 分枝杆菌存在的地点1、各种临床标本，通常是痰，胃或支气管灌洗液、脑脊液、尿液等。2、被污染的操作台、器械、仪器、试剂等。3、收集的结核分枝杆菌、非结核分枝杆菌菌株等。4、细菌学实验室的部分区域。 (二) 产生分枝杆菌气溶胶1、实验室内可疑肺结核患者痰标本的采集。2、样本的制备和涂片的火焰固定。3、分离培养或接种培养物。4、用火焰烧灼接种环。5、使用移液器混合培养物。6、培养管或培养瓶中含有培养物的滴落物。7、溢出的分枝杆菌悬浮液。8、高速混合含有分枝杆菌的液体。9、转移液态培养物和上清液，或培养液、上清液的倾倒。10、离心过程中离心管的破碎。11、用做原代培养所需的组织匀浆。 安全防护安全防护(一) 严格遵守实验室安全操作规程，任何时侯都要警惕分枝杆菌气溶胶的 产生。实验室的技术人员必须经过生物安全培训后方可上岗。(二) 实验室应严格限制非实验人员进入，减少实验室内外交叉生物污染。 完成实验工作离开实验室，要关好门窗。(三) 进入实验室应避免携带非必需物品。(四) 进入实验室，工作人员应穿着工作服，操作时应穿戴防护隔离衣、口 罩、帽子和手套，长发者应将头发装束在帽子内。(五) 实验过程中绝对禁止吸烟、饮食等，不要以手抚头面部等。(六) 试验前须开启紫外线灯对实验室和操作区域进行照射消毒 1 小时以上； 试验结束后，立即开启紫外灯进行照射消毒 2 小时以上。(七) 任何试验的开始和结束后，操作人员要用 70%酒精浸泡双手或仔细擦 后，用清洁剂或清水洗净。(八) 每次试验结束后，必须清理好实验台，并用 70%酒精液或 3-5%石炭 酸擦洗实验台面。 (九) 实验室中的生物危险品要根据检查项目和性质不同，局限在相应的试 验区间，不得随意将其带到其它的实验室。 (十) 实验室内任何微生物的样本，废弃物都必须经高温高压灭菌后，方可 按一般垃圾处理。 安全保障安全保障(一) 首先各级实验室应按等级要求完善实验设施，如简易安全柜内的抽气排风功能、紫外灯消毒功能，生物安全柜维护与除菌滤膜定期更换等。(二) 实验室采集病人痰标本时应在户外进行，避免因病人咳漱造成室内气 溶胶污染。(三) 普通实验室应注意气流方向，实验过程中尽量避免强气流变化而产生 气溶胶（如涂片、染色过程中） 。(四) 细菌的分离培养、菌种开封、转种、研磨、稀释等操作，各级实验室 均应在简易安全柜或生物安全柜中进行。(五) 使用接种环进行操作时，接种环应在工作灯的内焰中燃烧，以避免菌 液或菌块飞溅。(六) 稀释菌液时，吸管、针管要缓慢插入试管或烧瓶底部，小心操作避免 产生气泡或气溶胶。 (七) 使用注射器加样时，用过的针头切勿再重新入套或拔开注射器与针头， 应直接放入锐器收集器，以免划破皮肤造成接种感染。(八) 菌株库要设专人管理，并按照国家微生物菌毒种管理办法执行。(九) 进行毒菌操作过程中，不要穿戴巳经污染的防护性手套触摸门柄、仪 器或毒菌区以外区域，避免由于粗心扩大污染范围。(十) 试验结束后，操作过程中所有可能与生物危险物接触或被污染的试验 器械和物品，能够高压消毒的必须高压消毒，不能进行高压消毒的设备、仪器， 应使用有效的消毒剂擦洗后再以紫外灯近距离长时间消毒。 (十一)实验中发生意外污染情况，应立即通知主管人员并做好处理污染物 和相应区域的准备，不得擅自采用其它禁止的方法进行消毒处理。(十二)实验室主任应制定规章和程序，只有告知潜在风险并符合进入实验 室特殊要求(如，经过免疫接种)的人，才能进入实验室。(十三)操作致病性微生物时，实验室入口处应贴有生物危险标志，并显示 以下信息：有关病原、生物安全级别、免疫接种要求、研究人员姓名、电话号 码、在实验室中必须佩带的个人防护设施、出实验室所要求的程序。(十四)实验室主任为实验室人员特别制定的标准操作程序或生物安全手册 中，应包括生物安全程序。对于有特殊风险的人员，要求阅读并在工作及程序 上遵照执行。(十五)实验室主任保证实验及其辅助人员接受适当的培训，包括和工作有 关的可能存在的风险、防止暴露的必要措施和暴露评估程序。（十六）实验室所用任何个人防护装备应符合国家有关标准的要求。实验室 应确保具备足够的有适当防护水平的清洁防护服供使用。还应穿戴其它的个人 防护装备，如手套、防护镜、面具、头部面部保护罩等。(十七)处理样本的过程中易产生高危害气溶胶时，要求同时使用适当的个 人防护装备、生物安全柜和/或其它物理防护设备。如可产生含生物因子的气溶 胶，应在适当的生物安全柜中操作。 (十八) 实验用鞋应舒适，鞋底防滑。应用皮制或合成材料的不渗液体的鞋 类。在从事可能出现漏出的工作时可穿一次性防水鞋套。在实验室的特殊区域 （例如有防静电要求的区域）或 BSL-3 和 BSL-4 实验室要求使用专用鞋（例如 一次性或橡胶靴子） 。 结核病实验室废物处理结核病实验室废物处理 一、实验室废弃物处理的目的：(一) 将操作、收集、运输、处理及处置废弃物的危险减至最小；(二) 将实验室废弃物对环境的有害作用减至最小。 二、实验室污物处理及消毒(一) 实验室含有生物危险物的临床标本及被污染的一次性用品，试验完成 后，应在操作台或实验区域内以紫外灯近距离照射消毒 2 小时以上，再经高压 消毒后方可丢弃或焚烧。 (二) 可重复使用的实验用品及器材，完成实验后，应在操作台或实验区域 内经紫外灯近距离照射消毒 2 小时以上后，再交有关人员进行高压消毒和煮沸 洗刷。(三) 实验用的试管、吸管、注射器，须装在加盖不漏的容器内，经高压灭 菌后取出。 (四) 培养物或实验室垃圾，在丢弃前必须经高压消毒和紫外灯近距离长时 间照射处理。不允许积存垃圾和实验室废弃物。已装满的容器应定期运走。在 去污染或最终处置之前，应存放在指定的安全地方，通常在实验室区内。(五) 实验室废弃物应置于适当的密封且防漏容器中安全运出实验室。有害 气体、气溶胶、污水、废液应经适当的无害化处理后排放，应符合国家相关的 要求。 (六)实验过程中，如标本或含标本的前消化处理液被打翻污染了操作台或 地面，应以吸满 70%酒精的卫生纸覆盖污染区，15 分钟以后卫生纸方可移去。 (七) 实验室内未经消毒的污水，禁止直接排入公共排水系统，更不允许混 入居民生活垃圾。 意外事故的处理意外事故的处理(一) 如果发生意外，必须立即通知实验室主管人员，并在有关人员的指导 监督下对出事现场进行处理，绝对禁止未经报告而私自对出事现场给予非规范 的处理。 (二) 实验过程中，如污染物溅落到身体表面，或有割伤、刺伤、烧伤、烫 伤等情况发生，应立即停止实验工作进行紧急处理，更换被污染的实验服，皮 肤表面用消毒液清洗，伤口以碘酒或酒精消毒，眼睛用无菌生理盐水冲洗。 (三) 如果发生菌液溢出，含菌种的培养管破碎等，造成中 、小面积污染， 可用比污染面积大 25%以上的纱布覆盖污染区域，边缘用脱脂棉围住，向纱布 倾倒 5%苯酚溶液或 70%的酒精，浸泡 2 小时以上（其间适量加溶液防止干燥） ， 再经紫外灯近距离（1 米内）照射 2 小时以上；被污染的器械、容器等立即浸 泡于 70%酒精中 2 小时以上，实验完成后再进行高压消毒处理。 (四) 如果发生气溶胶污染或大面积污染，应立即停止实验并关闭实验室， 对污染区域进行紫外灯照射消毒过夜；第二天对污染区进行 24 小时封闭空气熏 蒸消毒（乙醛消毒法5ml 乙醛2g 高锰酸钾/m3 空间） 。 (五) 绝对禁止使用的事故处理方法1. 任何有可能造成污染面积扩大的去污方法，如使用 70%乙醇或甲酚皂液 擦洗被污染的区域。2. 直接用火焰对未经任何处理的污染地面、操作台、器械等进行烧灼处理。3. 使用消毒效果未经证实的消毒剂进行消毒。4. 使用低浓度的消毒剂和紫外灯进行短时间、长距离的照射。第四章第四章 霍乱弧菌的生物危害评估报告霍乱弧菌的生物危害评估报告霍乱(cholera)是由霍乱弧菌所致的烈性肠道传染病，临床表现轻重不一，典型病例病 情严重，有剧烈吐泻、脱水、微循环衰竭、代谢性酸中毒和急性肾功能衰竭等。治疗不及 时常易死亡，属甲类传染病。过去将古典生物型(classical biotype)霍乱弧菌所致的感染称为 霍乱，由爱尔托生物型(EI Tor biotype)所致者称副霍乱。鉴于霍乱弧菌的两个生物型在形 态和血清学方面几乎一样，两种弧菌感染的临床表现和防治措施基本相同，因此，分别命 名为霍乱和副霍乱并无必要，而统称为霍乱。世界第五、六次大流行与古典生物型有关， 第七次则由印尼地方流行的爱尔托生物型所致，延续至今未止。而 1992